免疫親和柱的原理:
本實驗測定的基礎是抗原抗體間的特異性反應。單克隆抗體被偶聯(lián)在柱內凝膠上,樣品中的經過提取、過濾、稀釋;然后將樣品提取液通過鍵合有抗體的親和柱。
此時,鍵合在親和柱中的抗體上。之后用蒸餾水將親合柱上的雜質除去。用甲醇洗脫親和柱,將從抗體上分離下來。將過濾的甲醇溶液注入熒光計或HPLC進行測定。
特點:
1、采用定向偶聯(lián)技術,抗體載量大,有效柱容量高。所有親和柱產品柱容量均滿足國標對于商品化柱容量的要求;
2、凝膠粒徑均勻,過柱自然流速即可,不需額外加壓;
3、采用抗體定向偶聯(lián)技術,樣本回收率高;
4、操作簡便,可洗脫后直接進樣,無需氮吹。
免疫親和柱的使用要點:
1、上柱的樣品溶液應該保持酸堿中性、無懸浮物、甲醇濃度不宜過高;
2、若樣品為復雜樣品,例如高蛋白、高油脂、酸性樣品,可以將提取液分兩次提取樣品,可以提高提取效果;
3、樣品過柱及甲醇洗脫速度要慢且均勻,約每秒1-2滴;
4、抗原抗體發(fā)生反應的最佳溫度是在25℃左右,實驗需要的環(huán)境溫度最好是室溫24℃-28℃,太高或太低的溫度都會對回收率有一定的影響。在使用前需要恢復至室溫再進行實驗;
5、不要在無水狀態(tài)下,瓊脂容易干燥萎縮,影響質量;
6、儲存條件為4℃-8℃。切記0℃以下的低溫,因為緩沖液凍結,會嚴重影響親和柱內的物理結構,對質量影響很大;
7、洗脫一般選擇試劑甲醇,為增強洗脫效果可加大甲醇體積;
8、樣液免疫凈化后,洗脫液過0.45um或更小孔徑濾膜效果更好。